Ультрафиолетовые светодиоды-Сфера применения
Ультрафиолетовые светодиоды за последние несколько лет достигли огромного роста. Это не только результат технологических достижений в производстве твердотельных УФ-устройств, но и все возрастающий спрос на экологически безопасные методы производства УФ-излучения, в котором в настоящее время доминируют ртутные лампы.
Нынешнее предложение ультрафиолетовых светодиодов на рынке оптоэлектроники состоит из продукта от 265 до 420 нм с различными стилями упаковки, включая сквозное отверстие, поверхностное крепление и COB (чип-борт). Существует множество уникальных приложений для УФ-излучателей; однако каждый из них сильно зависит от длины волны и выходной мощности. В общем, ультрафиолетовый свет от светодиодов можно разделить на 3 общие области. Они классифицируются как УФ-А, УФ-В и УФ-С.
Понятие ультрафиолетовые светодиоды и меры предосторожности
Применения
«Верхние» устройства типа UVA доступны с конца 1990-х годов.
За последние несколько лет «средний» компонент светодиодных компонентов UVA показал наибольший рост. Большинство применений в этом диапазоне длин волн (приблизительно 350 нм – 390 нм) предназначены для УФ-отверждения как коммерческих, так и промышленных материалов, таких как клеи, покрытия и краски. Светодиоды обладают значительными преимуществами по сравнению с традиционными технологиями отверждения, такими как ртуть или флуоресцентные из-за повышенной эффективности, снижения стоимости владения и миниатюризации системы.
Хотя стоимость этого диапазона длин волн значительно выше, чем верхняя область UVA, быстрые успехи в производстве, а также увеличение объемов неуклонно снижают цены. «Нижний» UVA и «верхний» диапазоны UVB (приблизительно 300 нм – 350 нм) являются самым последним введением на рынок. Эти устройства предлагают возможность использования в различных приложениях, включая УФ-отверждение, биомедицинскую, ДНК-анализ и различные типы зондирования. Существует значительное перекрытие во всех 3 спектральных диапазонах ультрафиолетового излучения; поэтому необходимо учитывать не только то, что лучше всего подходит для приложения, но и то, что является наиболее экономичным решением, так как более низкая длина волны, как правило, выше, чем стоимость светодиодов.
«Нижний» UVB и «верхний» диапазоны UVC (приблизительно 250 нм – 300 нм) – это область, которая все еще очень в зачаточном состоянии, однако есть большой энтузиазм и спрос на этот продукт в системах очистки воздуха и воды. В настоящее время существует только несколько компаний, способных производить УФ-светодиоды в этом диапазоне длин волн и даже меньшее количество, которые производят продукт с достаточными жизненными, надежными и эксплуатационными характеристиками. В результате затраты на устройства в диапазоне UVC / B все еще очень высоки и могут быть дорогостоящими в некоторых приложениях. Внедрение в 2012 году первой коммерческой системы дезинфекции на основе светодиодов UVC помогло продвинуть рынок вперед, где многие компании теперь серьезно подсматривают продукты на основе светодиодов.
Общий вопрос, связанный с ультрафиолетовыми светодиодами, заключается в следующем: представляют ли они какие-либо риски для безопасности?
Как описано выше, существуют различные уровни УФ-излучения. Одним из наиболее часто используемых и знакомых источников для производства УФ-излучения является «черная лампочка». Этот продукт используется в течение десятилетий, чтобы произвести светящееся или флуоресцентное воздействие на определенные типы плакатов, а также для других применений, таких как аутентичность картин и валюты.
UVC и большая часть спектра UVB света в основном используются для бактерицидных и стерилизационных целей. Свет, создаваемый на этих длинах волн, не только вреден для микроорганизмов, но и опасен для людей и других форм жизни, которые могут соприкасаться с ним. Эти светодиодные лампы всегда должны быть экранированы и никогда не должны быть видны невооруженным глазом, хотя может показаться, что свет или свет отсутствуют от устройства. Воздействие этих длин волн может вызвать рак кожи и временную или постоянную потерю зрения или ухудшение зрения.
Все УФ-устройства должны иметь предупреждающие надписи, аналогичные этикетке, показанной ниже (предоставляется Marktech Optoelectronics). Кроме того, перед покупкой светодиодов UVC или UVB многие производители требуют, чтобы каждый клиент подписывал документ, в котором они понимали и соглашались с мерами предосторожности в отношении использования и обработки этих продуктов.
Обзор УФ светодиода 365 нм.
Обзор ультрафиолетового светодиода 365 нм.
Обязательно посмотрите видео на каналах (есть тематические плейлисты):
https://www.youtube.com/channel/UCn5qLf1n8NS-kd7MAatofHw
https://www.youtube.com/channel/UCoE9-mQgO6uRPBQ9lsPZXxA
Мой канал на Яндекс Дзен zen.yandex.ru/id/5c50c2abee8f3100ade4748d
Обновлённую версию этой статьи с комментариями можно почитать на Дзен.
Видео с этим светодиодом, в котором присутствует сравнение последствий воздействия ультрафиолета и синего света на полиуретан, проверка светодиода на 365 нм, свечение хинина в Schweppes Индиан Тоник и невидимых красок под УФ:
youtube.com/embed/Y5BMKRZS8r4?wmode=transparent&autoplay=0&mute=0&theme=dark&controls=1&autohide=1&loop=0&showinfo=0&rel=0&enablejsapi=0″ src=»https://www.youtube.com/embed/Y5BMKRZS8r4?wmode=transparent&autoplay=0&mute=0&theme=dark&controls=1&autohide=1&loop=0&showinfo=0&rel=0&enablejsapi=0″ frameborder=»0″ title=»External YouTube» aria-label=»External YouTube» data-testid=»youtube» allowfullscreen=»»/>
Обновлённую версию этой статьи с комментариями можно почитать на Дзен.
Рекомендую посмотреть ещё несколько статей и обзоров:
«Как проверить защиту очков от ультрафиолета»;
«Развенчиваем полумиф о том, что оконное стекло не пропускает ультрафиолет»;
«Тушение фосфоресценции»;
«Обзор мультиметра Victor 88E с разборкой»;
«Обзор качественной светодиодной лампы Navigator 18 Вт Е27».
Несколько видео, которым не помешают просмотры:
youtube.com/embed/vf8FfLbjj0s?wmode=transparent&autoplay=0&mute=0&theme=dark&controls=1&autohide=1&loop=0&showinfo=0&rel=0&enablejsapi=0″ src=»https://www.youtube.com/embed/vf8FfLbjj0s?wmode=transparent&autoplay=0&mute=0&theme=dark&controls=1&autohide=1&loop=0&showinfo=0&rel=0&enablejsapi=0″ frameborder=»0″ title=»External YouTube» aria-label=»External YouTube» data-testid=»youtube» allowfullscreen=»»/>
Не пропустите много другой интересной информации! Все статьи (вместе с новыми) есть по ссылке: https://zen. yandex.ru/id/5c50c2abee8f3100ade4748d
Жду всех на каналах:
https://www.youtube.com/channel/UCn5qLf1n8NS-kd7MAatofHw https://www.youtube.com/channel/UCoE9-mQgO6uRPBQ9lsPZXxA
Пожалуйста, поделитесь понравившимися видео в соцсетях и на других сайтах!
Полезные советы. Выбор ультрафиолетового фонаря.
Ультрафиолетовые фонари пользуются повышенным спросом, однако у покупателей при выборе часто возникают вопросы. В нашей новой статье мы попытались в простой и доходчивой форме ответить на основные вопросы: что такое УФ-свет, что можно увидеть при помощи него и как выбрать УФ-фонарик.
Что такое ультрафиолетовый свет
Ультрафиолетовый свет — это электромагнитное излучение. Ультрафиолетовый (УФ) свет находится в диапазоне спектра между видимым светом и рентгеновскими лучами. Наглядным представлением спектра является радуга, так вот: ультрафиолетовое излучение находится перед (слева) фиолетовым светом. Длина волн ультрафиолетового света простирается в диапазоне от 100 нм до 400 нм. Ультрафиолетовое излучение в диапазоне 100—315 нм невидимо для человеческого глаза, а «мягкий ультрафиолет» длинноволнового диапазона (315—400 нм) воспринимается как слабый фиолетовый или серовато-синий свет. УФ-свет с длинной волны менее 300 нм может быть вреден для здоровья, особенно для кожи и глаз.
Ультрафиолетовые эффекты
Многие органические и неорганические вещества, искусственные и природные минералы, а также некоторые живые организмы, при облучении УФ светом начинаю светиться, такой эффект называется флуоресценция. Использование данного эффекта нашло широкое применение в современной жизни. А в качестве источников УФ-света стали использовать портативные светодиодные фонари. Интереснейший факт: смертельно-опасные скорпионы светятся в темноте при ультрафиолетовом свете!
Применение в быту
Чаще всего в быту ультрафиолетовые фонари используют для: проверки подлинности денежных купюр и документов, контроля чистоты и качества уборки, поиска меток или мочи домашних животных. А также в качестве развлечения, ведь в УФ-свете обычные предметы светятся невероятно ярко и красиво. На фотографии ниже обычная ванна при освещении ультрафиолетом, видно, что уборка проводится недостаточно хорошо — органическая грязь ярко светится.
УФ фонари для профессионалов
Современные легкие и долговечные УФ-фонари широко используются спелеологами, охотниками, автомеханиками, в гостиничном хозяйстве, криминалистике и во множестве других областей человеческой деятельности. Спелеологи ведут поиск минералов, а также определяют их качество. В Калининградской области распространён поиск янтаря при помощи ультрафиолетовых фонарей. Охотникам ультрафиолетовый фонарик поможет выследить подранка в ночной охоте по следам капель крови, которые контрастируют в УФ-свете. Автомеханики с легкостью найдут утечку антифриза и других жидкостей, если добавить в них УФ-люминофора. На фотографии янтарь в лучах ультрафиолета на песчаном пляже на берегу Балтийского моря.
Какой выбрать фонарь 365 нм или 395 нм
Большинство фонарей, из доступных в продаже, имеют длину волны 395 или 365 нм, так как при таких длинах волн возникает большинство люминесцентных эффектов.
Как правило, цена фонаря 395nm ниже, аналогичного со светодиодом 365nm. Так какой же фонарь выбрать!? Вам нужен фонарь 395 нм, если вы будете использовать его для конкретных задач, когда знаете, что длина волны должна быть 395нм. Для примера — это могут быть УФ краски, УФ клеи и т.д., в инструкции к которым указана конкретная длина УФ излучения. Во всех остальных случаях предпочтительнее приобрести фонарь 365 нм, так как такие фонари обладают меньшей «паразитной» засветкой в видимом спектре и, следовательно, более мощным УФ-излучением. Так как ни один фонарь не может излучать свет строго определенной длины волны, то «паразитной» засветкой называют все «лишнее» излучение. Для примера, в свете фонаря 365 нм более четко видны защитные знаки на купюре, а в свете 395 нм, часть знаков не видно вовсе.
Питание УФ фонарей
Элементы питания – важная часть фонаря. Внимательно читайте описание на сайте. В качественных, а тем более профессиональных фонарях, преимущественно используют литиевые аккумуляторы, их стоимость значительно выше обычных батареек АА, и как правило требуется дополнительное зарядное устройство. Но в отличии от батареек, литиевые аккумуляторы способны обеспечить необходимый ток питания для нормальной работы светодиодов. Батарейками же, как правило комплектуют менее мощные фонари с длиной волны 395нм.
Мы рекомендуем
Основываясь на многолетнем опыте продаж и отзывах наших клиентов, мы смело можем рекомендовать следующие фонари Convoy S2 UV 365nm, Convoy S2+ UV 365nm, Ultrafire WF-501B UV 395nm , они отличаются высоким качеством, надежностью и удобством использования.
ВЫБРАТЬ УЛЬТРАФИОЛЕТОВЫЙ ФОНАРИК
Что такое ультрафиолетовый фонарик?
Ультрафиолетовый фонарь — это тип фонарика, который излучает свет в ультрафиолетовом спектре. Он используется в самых разных приложениях, таких как идентификация поддельных документов и поиск утечек в холодильниках. Фонарь обычно напоминает стандартный фонарик и состоит из светодиода (светодиода) и ручки. Они могут быть различных форм, таких как маленькие, размером с руку или большие модели в виде фонарей.
Ультрафиолетовый свет (УФ-свет) относится к свету, длина волны которого меньше, чем у видимого света. Это называется ультрафиолетовым , потому что фиолетовый — это цвет самой короткой длины волны видимого света. Ультрафиолетовый свет встречается в солнечном свете. Это также иногда называют черным светом .
Есть много разных типов ультрафиолетовых фонариков. Основная часть фонаря может быть изготовлена из различных материалов, таких как алюминий или пластик. Обычно водонепроницаемые, большинство ультрафиолетовых фонарей работают от стандартных батарей.
Светодиод является одной из важнейших частей ультрафиолетового фонарика. Некоторые модели имеют настройки, которые позволяют ему светиться на переменных выходах. Это позволяет пользователю производить точное количество света, необходимое для выполнения задачи. Светодиод обычно ударопрочный, для долговечности. Качество рефрактора ультрафиолетового фонаря может определять плавность светового луча, создаваемого светодиодом. Расстояние, покрываемое светодиодом, обычно варьируется.
Ультрафиолетовый фонарик имеет много различных применений. Это идеальный инструмент для освещения плохо освещенных участков. Ночные клубы могут использовать их, чтобы проверить входные ручные марки на постоянных посетителей. Криминальные следователи часто используют ультрафиолетовые фонари для поиска возможных улик на месте преступления. Ремонтники обычно используют этот инструмент для поиска трещин или утечек в оборудовании, расположенном в темных местах.
Эти УФ-устройства часто также используются для проверки подлинности документов. Например, предметы с голограммой для предотвращения подделок, такие как кредитные карты, можно проверить с помощью ультрафиолетового фонарика. Прозрачный свет на голограмме позволяет увидеть дизайн, который был встроен в голограмму для авторизации.
Многие ультрафиолетовые фонарики могут быть опасны, если человек смотрит прямо в них, потому что это может привести к повреждению зрения. Прожигание фонарика на отражающей поверхности, такой как зеркало, также может быть опасным для зрения. Чрезмерное воздействие на кожу ультрафиолетового света также может быть вредным, так как передержка приводит к разрушению витамина А. Однако это обычно не проблема с ультрафиолетовыми фонарями, поскольку его обычные применения обычно не требуют его использования на коже в течение длительного периода времени.
ДРУГИЕ ЯЗЫКИ
OSV2YL5111A за 62.40 ₽ в наличии производства OPTOSUPPLY
Купить LED 5мм ультрафиолетовый OSV2YL5111A производителя OPTOSUPPLY можно оптом и в розницу с доставкой по всей России, Казахстану, Республике Беларусь и Украине, а так же в другие страны Таможенного союза (Армения, Киргизия и др.).
Для того, чтобы купить данный товар по базовой цене в розницу, положите его в корзину и оформите заказ следуя детальной инструкции. Обращаем Ваше внимание, что в зависимости от увеличения объёма продукции перерасчёт розничной цены будет произведен автоматически. Оптовая цена на led 5мм ультрафиолетовый ?d 370-380нм 15° OSV2YL5111A выставляется исключительно после отправки коммерческого запроса на e-mail: [email protected] или [email protected]
- Более подробная информация находится в разделе Оплата.
Мы работаем со всеми крупными транспортными компаниями и гарантируем оперативность и надежность каждой поставки независимо от региона присутствия заказчика. Данный товар так же поставляются с различных складов Европы, Китая и США. Возможные варианты поставки запрашивайте у специалистов компании SUPPLY24.ONLINE.
- Более подробная информация находится в разделе Доставка.
Гарантия предоставляется непосредственно заводом-изготовителем OPTOSUPPLY . Гарантийный ремонт или замена оборудования осуществляется исключительно после проведения экспертизы и установления факта гарантийного случая.
УФ светодиоды практически всех известных мировых брендов представлены нашей компанией. В случае если интересующий Вас товар не был найден на нашем сайте, обратитесь в службу технической поддержки или обслуживающему Вас менеджеру и наши инженеры подберут аналоги для Вашего оборудования. Таким образом, возможно снизить затраты до 20% на обслуживание оборудования и оптимизировать Ваши расходы. Компания SUPPLY24.ONLINE берёт на себя полную ответственность за правильность подбора аналога. Наша компания предлагает только разумный подход, если по ряду критериев запрашиваемый товар не подразумевает замену на аналог, мы не предлагаем замену.
Стратегическая цель нашей компании помочь Вам подобрать оборудование и товар с оптимальными характеристиками, и разобраться в огромном количестве товарных позиций и предложений.
Внимание!
- Характеристики,внешний вид и комплектация товара могут изменяться производителем без уведомления.
- Изображение продукции дано в качестве иллюстрации для ознакомления и может быть изменено без уведомления.
- Точную спецификацию смотрите во вкладке «Характеристики» .
- При необходимости установки программного обеспечения и использования аксессуаров сторонних производителей, просьба проверить их совместимость с устройством, детально изучив документацию на сайте производителя OPTOSUPPLY
- Запрещается нарушение заводских настроек и регулировок без привлечения специалистов сертифицированных сервисных центров.
Характеристики
Производитель
Рабочее напряжение
Рабочая температура
ультрафиолетовый
Оптическая мощность
Диаметр диода LED
ДОСТАВКА ПО РОССИИ
Доставка осуществляется в течении 2-3 дней с момента зачисления средств на р/с компании при наличии товара на складе в РФ. В отдельных случаях, при большой удаленности Вашего региона, срок доставки может быть увеличен.
- Полный перечень городов, в которые осуществляется доставка, смотрите ниже.
ДОСТАВКА В СТРАНЫ ТАМОЖЕННОГО СОЮЗА
Доставка осуществляется в течении 3-5 дней с момента зачисления средств на р/с компании в следующие страны.
- Казахстан
- Армения
- Беларусь
- Киргизия
Обращаем Ваше внимание на то, что сроки доставки товаров напрямую зависят от наличия товара на Российском складе компании.
В случае, если выбранные товарные позиции находятся на одном из внешних складов Европы или США, то срок доставки товара может составлять до 3-4 недель. Для избежания недоразумений, рекомендуем уточнить актуальные сроки поставки в отделе логистики или у менеджера компании.
В данном случае, как правило, 90% заказов доставляются заказчикам в течении первых 2 недель.
Если какая-либо часть товара из Вашего заказа отсутствует на складе, мы отгрузим все имеющиеся в наличии товары, а после поступления с внешнего склада оставшейся части заказа отправим Вам её за счёт нашей компании.
ОФИСЫ ВЫДАЧИ ТОВАРА:
Доставка до ТК осуществляется бесплатноCКЛАДЫ
Magnaflux EU EN
Ваша конфиденциальность
Когда вы посещаете веб-сайт, он может собирать информацию о вашем браузере, ваших предпочтениях или вашем устройстве, чтобы веб-сайт работал так, как вы ожидаете. Эта информация собирается в виде файлов cookie. Собранная информация не идентифицирует вас напрямую, но может дать вам более персонализированный опыт работы с сайтом. Ниже описаны различные типы файлов cookie, которые мы используем, и вы можете запретить использование некоторых типов файлов cookie. Щелкните заголовок категории, чтобы узнать больше и изменить настройки файлов cookie по умолчанию. Обратите внимание, что блокировка некоторых типов файлов cookie может повлиять на работу вашего веб-сайта.
Совершенно необходимо
Эти файлы cookie необходимы для того, чтобы вы могли перемещаться по веб-сайту и использовать его функции. Без этих файлов cookie услуги веб-сайта, такие как запоминание товаров в корзине, не могут быть предоставлены. Мы не можем отключить эти файлы cookie в системе.Хотя вы можете настроить свой браузер так, чтобы он блокировал или предупреждал вас об этих файлах cookie, некоторые части веб-сайта не будут работать без них.
Модулей:Производительность
Эти файлы cookie собирают анонимную информацию о том, как люди используют веб-сайт: посещения веб-сайта, источники трафика, шаблоны кликов и аналогичные показатели. Они помогают нам понять, какие страницы наиболее популярны. Вся собранная информация агрегирована и поэтому анонимна.Если вы не разрешите использование этих файлов cookie, мы не узнаем, когда вы посетили наш веб-сайт.
Модулей:Функциональный
Эти файлы cookie запоминают сделанный вами выбор, например страну, из которой вы посещаете веб-сайт, язык и т.д. Они могут быть установлены нами или сторонними поставщиками, услуги которых мы добавили на страницы нашего веб-сайта.Если вы не разрешите использование этих файлов cookie, некоторые функции могут работать не так, как задумано.
Модулей:Таргетинг / реклама
Эти файлы cookie собирают информацию о ваших привычках просмотра, чтобы сделать рекламу более актуальной для вас и ваших интересов. Они создаются через наших рекламных партнеров, которые учитывают ваши интересы и нацеливают вас на релевантную рекламу на других веб-сайтах или платформах. Если вы не разрешите использование этих файлов cookie, вы не увидите нашу таргетированную рекламу в других местах в Интернете.
Модулей: ИксASP.NET Framework
Технологический стек, необходимый для хостинга веб-сайта
ИксДиспетчер тегов Google
Используется для загрузки скриптов на страницы сайта.
ИксGoogle Analytics
Google Analytics собирает информацию о веб-сайтах, позволяя нам понять, как вы взаимодействуете с нашим веб-сайтом, и, в конечном итоге, обеспечить лучший опыт.
Имя файла cookie:
- _ga
Регистрирует уникальный идентификатор, который используется для генерации статистических данных о том, как посетитель использует веб-сайт.
лет
Срок действия: 2 - _gid
Регистрирует уникальный идентификатор, который используется для генерации статистических данных о том, как посетитель использует веб-сайт.
Срок действия: 24 часы - NID
Cookie содержит уникальный идентификатор, который Google использует для запоминания ваших предпочтений и другой информации, такой как предпочитаемый вами язык (например.грамм. Английский), сколько результатов поиска вы хотите отображать на странице (например, 10 или 20) и хотите ли вы, чтобы фильтр SafeSearch Google был включен.
лет
Срок действия: 2 - _gat_UA — ######## — #
Используется для ограничения скорости запросов. Если Google Analytics развернут через Диспетчер тегов Google, этот файл cookie будет называться _dc_gtm_
Срок действия: 1 минута - _gac_ <идентификатор-свойства>
Содержит информацию о кампании для пользователя. Если вы связали свои учетные записи Google Analytics и AdWords, теги конверсии веб-сайтов AdWords будут считывать этот файл cookie, если вы не отключите их.
Срок действия: 90 дней - AMP_TOKEN
Содержит токен, который можно использовать для получения идентификатора клиента из службы идентификатора клиента AMP. Другие возможные значения указывают на отказ, запрос в полете или ошибку при получении идентификатора клиента из службы идентификатора клиента AMP
год
Срок действия: 1
Titan Consent Manager
Используется для отслеживания настроек конфиденциальности и согласия конечных пользователей на веб-сайтах, размещенных на Titan CMS.
Имя файла cookie:
- TitanClientID
Однозначно идентифицирует пользователя для поддержки исторического отслеживания предпочтений согласия
лет
Истечение срока: 10 - CookieConsent_
Отражает самые последние настройки согласия для текущего сайта.
лет
Срок действия: 2
Поиск IP
Эти файлы cookie используются Magnaflux для направления пользователей на веб-сайт Magnaflux для их конкретной страны. Это делается автоматически.
ИксПардо
Для наших веб-сайтов, которые содержат веб-формы или отслеживание Pardot, мы собираем информацию о страницах, которые вы посещаете, о том, как долго вы находитесь на сайте, как вы сюда попали и на что нажимаете.Pardot помогает Magnaflux обеспечить беспроблемный пользовательский интерфейс для тех клиентов и пользователей, которые создали у нас учетную запись для получения сообщений электронной почты.
Имя файла cookie:
- visitor_id #
Однозначно идентифицирует пользователя
лет
Срок действия: 10 - visitor_id # -HASH
Однозначно идентифицирует пользователя
лет
Срок действия: 10 - pi_opt_in
Флаг согласия на получение личной информации
лет
Истечение срока действия: 10 - ИПВ
Неклассифицированный
Срок действия: Сессия - Пардо
Неклассифицированный
Срок действия: Сессия - dtCookie
Неклассифицированный
Срок действия: Сессия
Поисковые запросы
Для наших веб-сайтов, содержащих поисковые запросы по пакетной сертификации переводов, мы устанавливаем файл cookie, в котором хранится используемый поисковый запрос.
ИксОтслеживание Google AdSense
Google использует файлы cookie для обслуживания рекламы, отображаемой на веб-сайтах своих партнеров, таких как веб-сайты, показывающие рекламу Google или участвующие в рекламных сетях, сертифицированных Google. Когда пользователи посещают веб-сайт партнера Google, в браузере этого конечного пользователя может быть сохранен файл cookie.
Имя файла cookie:
- IDE
Используется Google для регистрации и сообщения о действиях пользователя веб-сайта после просмотра или нажатия на одно из рекламных объявлений рекламодателя с целью измерения эффективности рекламы и представления целевой рекламы пользователю.
Срок действия: 6 мес - NID
Неклассифицированный
Срок действия: 6 мес - DSID
Неклассифицированный
Срок действия: Сессия
Отслеживание Google AdSense
Собирает данные для измерения эффективности просмотренных или нажатых объявлений и показывает таргетированные объявления.
Имя файла cookie:
- г / сбор
Неклассифицированный
Срок действия: 6 мес - IDE
Используется Google DoubleClick для регистрации и сообщения о действиях пользователя веб-сайта после просмотра или нажатия на одно из объявлений рекламодателя с целью измерения эффективности объявления и представления пользователю целевой рекламы.
год
Срок действия: 1 - test_cookie
Используется для проверки поддержки файлов cookie браузером пользователя.
Срок действия: Сессия
Аутентификация Titan CMS
Технологический стек, необходимый для хостинга веб-сайта
Использование светоизлучающих диодов UVC на длинах волн от 266 до 279 нанометров для инактивации пищевых патогенов и пастеризации нарезанного сыра
Abstract
Свет UVC — широко используемая технология стерилизации. Однако у УФ-ламп есть несколько ограничений, включая низкую активность при температурах охлаждения, длительное время прогрева и риск воздействия ртути. Лампы УФ-типа излучают свет только с длиной волны 254 нм, поэтому в качестве альтернативы были разработаны УФ-светодиоды (УФ-светодиоды), которые могут излучать желаемые длины волн. В этом исследовании мы подтвердили эффективность инактивации УФ-светодиодов по длине волны и сравнили результаты с результатами обычных УФ-ламп. Селективные среды, инокулированные Escherichia coli O157: H7, Salmonella enterica, серовар Typhimurium и Listeria monocytogenes , облучали УФ-светодиодами при 266, 270, 275 и 279 нм в спектре UVC при 0.1, 0,2, 0,5 и 0,7 мДж / см 2 соответственно. Интенсивность излучения УФ-светодиодов составляла около 4 мкВт / см 2 , а УФ-лампы были покрыты полипропиленовой пленкой для регулировки интенсивности света, аналогичной интенсивности света УФ-светодиодов. Кроме того, мы применили УФ-светодиод к нарезанному сыру в дозах 1, 2 и 3 мДж / см 2 . Наши результаты показали, что уровни инактивации после обработки УФ-светодиодами значительно отличались ( P <0,05) от таковых для УФ-ламп при аналогичной интенсивности.На микробиологических средах обработка УФ-светодиодами при 266 и 270 нм показала значительно отличающиеся ( P <0,05) эффекты инактивации по сравнению с другими модулями длины волны. Для нарезанных сыров 4-5-логарифмическое снижение произошло после обработки 3 мДж / см 2 для всех трех патогенов с незначительным образованием поврежденных клеток.
ВВЕДЕНИЕ
УФ-свет охватывает спектр длин волн от 100 до 380 нм и подразделяется на три области по длине волны: УФА (от 320 до 400 нм), УФВ (от 280 до 320 нм) и УФС (от 200 до 280 нм) ( 1).Среди них УФС обладает сильнейшим бактерицидным действием и широко используется в виде ртутных ламп для инактивации микроорганизмов. Однако ртутные УФ-лампы имеют несколько критических ограничений. Во-первых, УФ-лампы хрупкие и, следовательно, представляют риск утечки ртути из-за поломки при любом ударе. Кроме того, время разогрева длится долго и, более того, не может быть максимальной эффективности при низких температурах, согласно более раннему исследованию. Из-за этих критических недостатков ртутных ламп в последнее время в качестве альтернативы была разработана технология ультрафиолетовых светодиодов (UV-LED).Конструкция светодиода обычно состоит из соединения полупроводниковых материалов «n-типа» и «p-типа». Ток вызывается подвижными электронами в слое «n-типа», а носителями являются положительно заряженные дырки в слое «p-типа». Чтобы испускать свет, электроны и дырки повторно соединяются в переходе (2). УФ-светодиодные лампы (УФ-светодиоды) очень малы по размеру по сравнению с обычными лампами, поэтому их можно легко включить в различные конструкции устройства (3). Кроме того, УФ-светодиоды излучают свет высокой интенсивности, как только они включаются; Другими словами, нет времени на прогрев.Кроме того, Shin et al. (4) продемонстрировали, что УФ-светодиоды не содержат ртути и обеспечивают стабильную мощность излучения независимо от температуры, что делает их эффективными даже при охлаждении. Хотя ртутные УФ-лампы излучают только одну длину волны (254 нм), УФ-светодиоды можно настроить на излучение определенных длин волн. Наиболее эффективная бактерицидная длина волны возникает на пике от 260 до 265 нм, при котором ДНК поглощает УФ больше всего (5, 6), и светодиоды могут быть разработаны для получения этих длин волн.
Listeria monocytogenes — самый важный и критический патоген, вызывающий озабоченность в сыроварении.Ежегодно в США госпитализируются 1600 человек и 260 человек умирают от листериоза (7). Вспышки Listeria обычно связаны с мягким сыром из непастеризованного молока. Мягкие сыры содержат от 45 до 50% влаги, они, как правило, гладкие, их легко перелить в ковш или намазать. Мягкие сыры, изготовленные из непастеризованного молока, относятся к продуктам очень высокого риска, и вероятность их заражения Listeria в 50–160 раз выше, чем для сыров, приготовленных из пастеризованного молока. Escherichia coli O157: H7 и Salmonella spp. также являются важными патогенами, вызывающими озабоченность в молочной промышленности. В 2010 году 38 человек были инфицированы E. coli O157: H7 в пяти штатах США после употребления сыра. Из-за этой вспышки 15 человек были госпитализированы, у одного человека был гемолитико-уремический синдром (8). Кроме того, в Канаде и США было зарегистрировано несколько случаев сальмонеллеза, связанных с употреблением сыра (9, 10).
Использование непастеризованного молока в качестве ингредиента для сыра опасно не только, но и во время сыроварения сыры могут быть заражены патогенами.Даже если сырое молоко пастеризовано, оно может быть заражено патогенами при обработке в антисанитарных условиях (11). По этим причинам мы выбрали нарезанный сыр в качестве целевой пищи в этом исследовании, и их плоские и ровные поверхности подходили для воздействия ультрафиолета.
В последнее время интерес к технологии УФ-светодиодов возрастает, но способность УФ-светодиода к инактивации в зависимости от длины волны никогда ранее не оценивалась. Итак, в этом исследовании мы изучили эффективность УФ-светодиода для инактивации трех основных патогенов пищевого происхождения, E.coli O157: H7, Salmonella enterica серовар Typhimurium и L. monocytogenes на твердой среде и сравнили его бактерицидную способность относительно длины волны УФС. Также было применено применение УФ-светодиода к нарезанному сыру, чтобы оценить его пригодность в качестве противомикробного средства контроля.
МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ
Экспериментальная установка.
Четыре модуля УФ-светодиодов (LG Innotek Co., Республика Корея), каждый с одинаковой максимальной длиной волны, были подключены к электронным печатным платам (PCB), и каждый набор PCB имел разную максимальную длину волны (266, 270 , 275 или 279 нм).Технические характеристики модулей УФ-светодиодов, используемых в этом эксперименте, указаны в. Напряжение постоянного тока от источника питания (серия TPM; Toyotech, Южная Корея) подавалось на все печатные платы в соответствии с предустановленным доступным током, который обеспечивал 23 мА для 266-нм печатных плат и 20 мА для 270-, 275- и 279-нм. Печатные платы. Основываясь на исследовании Шина (4), мы решили использовать четырехугольное расположение модулей в этом эксперименте с расстоянием 6 см между модулями и расстоянием 4 см между светодиодами и образцами (чашка Петри диаметром 90 мм, нарезанная сыр) для равномерного распределения излучения и оптимальной конфигурации светодиодов.ПХБ и инокулированные среды помещали в камеру для обработки (TH-TG-300; JEIO Tech, Южная Корея). Лампа UVC (G10T5 / 4P; 357 мм; Sankyo, Япония) с номинальной выходной мощностью 16 Вт использовалась для сравнения двух источников УФ-излучения на эффективность инактивации патогенов. Пиковая длина волны УФ-лампы составляла 254,31 нм.
ТАБЛИЦА 1
Технические характеристики модулей УФ-светодиодов, использованных в экспериментах
Expt | Напряжение (В) при различных длинах волн / токах a | |||
---|---|---|---|---|
266 нм / 2370 мА 270 нм / 20 мА | 275 нм / 20 мА | 279 нм / 20 мА | ||
1 | 6. 70 | 6,49 | 6,47 | 6,33 |
2 | 6,92 | 6,50 | 6,48 | 6,37 | 3 | 7,12 6,52 | 3 | 7,12 6,52 | 7,12 6,52 | 7,12 | 6,72 | 6,50 | 6,47 | 6,37 |
Измерения энергетической освещенности.
Интенсивность УФ-светодиодных модулей измерялась с помощью спектрометра (AvaSpec-ULS2048-USB2-UA-50; Avantes, Нидерланды), откалиброванного для диапазона от 200 до 400 нм, чтобы охватить весь УФ-спектр.Для обработки образца расстояние между коллимированными светодиодами и оптическим зондом составляло 4 см, и было измерено значение энергетической освещенности спектра при максимальной длине волны. Фактор Петри, который указывает на равномерность УФ-излучения, достигающего чашки Петри, был рассчитан путем сканирования поверхности чашки Петри через каждые 5 мм зондом (12). Для расчета скорректированной интенсивности максимальное значение интенсивности умножалось на полученный фактор Петри.
С целью уменьшения естественной интенсивности УФ-ламп, чтобы обеспечить сопоставимое излучение УФ-светодиодов, которое колеблется от 4 до 5 мкВт / см 2 , УФ-лампа была покрыта 52 листами полипропилена (PP ) пленка (толщина, 0.05 мм), а расстояние между зондом и лампой устанавливали равным 20 см. Фактор Петри и скорректированная интенсивность рассчитывались методом, используемым для УФ-светодиодов.
Штаммы бактерий.
Три штамма E. coli O157: H7 (ATCC 35150, ATCC 43889 и ATCC 43890), S . Typhimurium (ATCC 19585, ATCC 43971 и DT104) и L. monocytogenes (ATCC 19111, ATCC 19115 и ATCC 15313) были получены из коллекции культур пищевых продуктов и питания человека в Сеульском национальном университете (Сеул, Южная Корея). .Исходные культуры хранили замороженными при -80 ° C в 0,7 мл триптического соевого бульона (TSB; MB Cell) и 0,3 мл 50% глицерина. Рабочие культуры наносили штрихами на триптический соевый агар (TSA; MB Cell), инкубировали при 37 ° C в течение 24 ч и хранили при 4 ° C.
Приготовление культур.
Каждый штамм E. coli O157: H7, S . Typhimurium и L. monocytogenes культивировали в 5 мл TSB при 37 ° C в течение 24 часов и собирали центрифугированием при 4000 × g в течение 20 минут при 4 ° C. Полученные осажденные клетки ресуспендировали в стерильном 0,2% бакто-пептоне (Becton-Dickinson, Sparks, MD) и центрифугировали. Эту процедуру промывания выполняли трижды для очистки клеток. Окончательно осажденные клетки ресуспендировали в 9 мл пептонной воды (PW), что соответствует приблизительно от 10 8 до 10 9 КОЕ / мл. Каждый штамм всех трех видов патогенов объединяли для приготовления коктейлей культур для использования в экспериментах.
Подготовка проб и посев.
Нарезанный сыр камамбер коммерческой переработки был приобретен в местном продуктовом магазине (Сеул, Южная Корея).Нарезанный сыр имел размер 85 на 85 на 2 мм. Образцы хранили в холодильнике (4 ° C) и использовали в течение 2 дней. Для экспериментов на поверхности среды коктейльную суспензию последовательно разводили в 10 раз в три раза 0,2% стерильным PW так, чтобы начальная концентрация посевного материала составляла приблизительно от 10 5 до 10 6 КОЕ / мл. Кроме того, суспензию культуры подвергали дополнительному 10-кратному серийному разведению в 0,2% PW, и 0,1 мл разбавителя инокулировали и распределяли по селективной среде или неселективному агару, например, основанию фенолового красного агара (Difco) с 1% сорбита ( d-сорбитол; MB Cell) (SPRAB) и TSA для подсчета поврежденных клеток.Каждую среду дважды наносили на чашки с тремя последовательными 10-кратными разведениями. Сорбитовый агар МакКонки (SMAC; Oxoid), агар с ксилозолизиндезоксихолатом (XLD; Oxoid) и агар на основе оксфордского агара с антимикробной добавкой (OAB; MB Cell) использовали в качестве селективной среды для подсчета E. coli O157: H7, S . Typhimurium и L. monocytogenes соответственно. Для инокуляции сыра 0,1 мл той же коктейльной суспензии, которая использовалась для экспериментов со средой, наносили на один кусок нарезанного сыра (прибл.25 г). Посевной материал распределяли с использованием стерильного стеклянного разбрасывателя каждые 5 минут для равномерного распределения патогенов, а образцы сушили в кожухе биологической безопасности в течение 15 минут без работы вентилятора, чтобы избежать чрезмерной засушливости поверхности. Конечная концентрация клеток составляла приблизительно от 10 6 до 10 7 КОЕ / 25 г.
УФ-обработка.
Инокулированные среды обрабатывали в камере при комнатной температуре печатными платами с УФ-светодиодами или УФ-лампой, покрытой полипропиленом, при пяти различных максимальных длинах волн при дозировках 0.1, 0,2, 0,5 и 0,7 мДж / см 2 . Продолжительность лечения для доз рассчитывалась делением УФ-доз на интенсивности с соответствующим коэффициентом пересчета. После обработки, чтобы свести к минимуму фотореактивацию, все обработанные УФ-излучением чашки Петри накрывали алюминиевой фольгой перед инкубацией. Кроме того, кусочки инокулированного нарезанного сыра обрабатывали теми же печатными платами с УФ-светодиодами при дозах 1, 2 и 3 мДж / см 2 в тех же условиях и в той же камере для обработки.
Подсчет бактерий.
После УФ-обработки в эксперименте с поверхностью среды обработанные среды немедленно инкубировали при 37 ° C в течение 24 часов. Что касается пищевых образцов, обработанные ломтики сыра переносили в стерильные пакеты для стомахера (Labplas, Inc., Канада) вместе с 225 мл стерильного 0,2% PW и гомогенизировали в течение 2 минут с использованием Stomacher (EasyMix; AES Chemunex, Франция). Аликвоты (1 мл) образца последовательно разводили в 10 раз в 9-мл заготовках 0,2% PW, и 0,1 мл разбавителя наносили на каждую селективную среду (описано ранее).Все агаризованные среды после обработки образцов пищевых продуктов инкубировали при 37 ° C в течение 24-48 ч и подсчитывали типичные колонии.
Перечень поврежденных клеток.
Метод наложения был использован для подсчета поврежденных клеток S . Typhimurium и L. monocytogenes (13). Неселективная среда TSA, которая позволяет реанимировать поврежденные клетки, использовалась так, чтобы можно было подсчитывать не только неповрежденные клетки, но и сублетально поврежденные клетки. Порции (0,1 мл) соответствующих аликвот дублировали и высевали на среду TSA, и планшеты инкубировали при 37 ° C в течение 2 часов, чтобы позволить поврежденным клеткам восстановиться. Затем на чашки наливали от 7 до 8 мл селективной среды XLD для S . Typhimurium или OAB для L. monocytogenes соответственно. После затвердевания образцов планшеты дополнительно инкубировали еще 22 часа при 37 ° C. После инкубации типичные черные колонии обоих S . Были подсчитаны Typhimurium и L. monocytogenes . Подсчет поврежденных E. coli O157: H7 проводили на основе фенолового красного агара с 1% сорбита (SPRAB) (14).После 37 ° C, 24 ч инкубации, подсчитывали типичные белые колонии и одновременно проводили серологическое подтверждение с использованием теста латексной агглютинации RIM E. coli O157: H7 (Remel, Lenexa, KS) на случайно выбранных презумптивных колониях E. coli O157: H7.
Измерение цвета.
Колориметр Minolta (модель CR400; Minolta Co., Япония) использовали для количественной оценки изменений цвета обработанных образцов для определения влияния обработки УФ-светодиодами на цвет нарезанного сыра. Было реализовано измерение CIE LAB, и для теста использовались L * (яркость), a * (зелено-красный) и b * (сине-желтый) цветности. Три случайно выбранных места на поверхности нарезанного сыра были проанализированы и усреднены для сравнения изменений цвета во время обработки УФ-светодиодами.
Статистический анализ.
Все эксперименты дублировали и повторяли три раза. Все данные были проанализированы с помощью ANOVA с использованием системы статистического анализа (Институт SAS, Кэри, Северная Каролина) и теста с множеством диапазонов Дункана для определения наличия значительных различий ( P <0.05) в средних значениях логарифма сокращения популяций микроорганизмов или изменения цвета.
РЕЗУЛЬТАТЫ
Спектр излучения УФ-лампы и УФ-светодиода.
Спектральная интенсивность УФ-лампы с длиной волны 254 нм, покрытой пленками PP, была измерена с помощью спектрометра, результаты представлены в. Фактическая длина волны пика составляла 254,31 нм, и по мере увеличения количества пленок ПП яркость УФ-лампы уменьшалась. Для 52 пленок PP была определена интенсивность лампы 254 нм, равная 3.97 ± 0,02 мкВт / см 2 , что составляло 0,47% от интенсивности лампы без покрытия. Кроме того, освещенность печатных плат УФ-светодиодов показана в. Фактические длины волн пиков светодиодных печатных плат составляли 266,25, 271,02, 275,80 и 279,37 нм соответственно, а значения интенсивности варьировались от 4 до 5 мкВт / см 2 .
Спектры излучения четырех разных пиковых длин волн (266, 270, 275 и 279 нм) печатных плат УФ-светодиодов (a) и абсолютная интенсивность УФ-лампы 254 нм, покрытой различным количеством пленок PP на расстоянии 20 см. расстояние между УФ источниками и зондом спектрометра (б).
Сравнение уменьшения количества микробов при использовании лампы 254 нм и УФ-светодиода 266 нм.
показывает уровни снижения количества жизнеспособных клеток E. coli O157: H7, S . Typhimurium и L. monocytogenes размножаются на селективных средах после обработки УФ-лампой с длиной волны 254 нм или УФ-светодиодом с длиной волны 266 нм. Оба лечения продемонстрировали одинаковую картину снижения количества патогенов пищевого происхождения; то есть более высокие дозы индуцировали более высокие уровни инактивации. Обработка УФ-светодиодами с длиной волны 266 нм в дозе 0.7 мДж / см 2 позволили достичь примерно 6-кратного снижения содержания E. coli O157: H7 и S . Typhimurium, соответственно, и снижение на 5,3 log L. monocytogenes . Другими словами, обработка УФ-светодиодами с длиной волны 266 нм, 0,7 мДж / см 2 продемонстрировала, что почти все инокулированные патогены были инактивированы при этой дозе. С другой стороны, уровни снижения при обработке УФ-лампой составляли 3,06, 1,42 и 0,34 log уменьшения E. coli O157: H7, S . Typhimurium и L.monocytogenes , соответственно, которые были значительно меньше ( P <0,05), чем уровни инактивации УФ-светодиода при той же дозе. Другие дозы (0,1, 0,2 и 0,5 мДж / см 2 ) также показали значительные различия между снижением количества трех патогенов пищевого происхождения, обработанных УФ-лампой и УФ-светодиодом. Для каждой дозировки уровень инактивации L. monocytogenes был наименьшим по сравнению с E. coli O157: H7 и S . Тифимуриум. Реанимация поврежденных клеток от УФ-лампы или УФ-светодиода наблюдалась с точки зрения числового уровня (данные не показаны), но статистически значимых различий не было ( P > 0.05).
Уменьшение E. coli O157: H7 (a), S . Typhimurium (b) и L. monocytogenes (c) на каждой селективной среде ( E. coli O157: H7; сорбитовый агар МакКонки, S . Typhimurium; дезоксихолат ксилозы, L. monocytogenes ; Oxford основа агара с антимикробной добавкой), обработанные УФ-лампой 254 нм и печатными платами УФ-светодиода 266 нм при 0,1, 0,2, 0,5 и 0,7 мДж / см 2 .
Эффект инактивации УФ-светодиода на различных средах, вызванный разными длинами волн.
Журнал сокращений E. coli O157: H7, S . Typhimurium и L. monocytogenes на средах, обработанных УФ-светодиодами с четырьмя разными длинами волн, показаны на. Уровни снижения показали тенденцию к увеличению в соответствии с лечебной дозой, достигнув примерно 6-логарифмического снижения E. coli O157: H7 и S . Typhimurium и 5-логарифмическое снижение L. monocytogenes при дозе 0,7 мДж / см 2 . Сравнение инактивации патогенов пищевого происхождения в отношении длин волн продемонстрировало, что УФ-обработка с относительно короткими длинами волн (266 и 270 нм) имела выраженный бактерицидный эффект при низких уровнях дозировки.В случае E. coli O157: H7, снижение более чем на 4 логарифма было продемонстрировано при 0,2 мДж / см 2 при обработке ПХБ 270 нм, а другие виды обработки ПХБ достигли снижения на 3-4 логарифма при те же дозы, которые были значительно ниже ( P <0,05). При 0,5 мДж / см 2 снижение> 5 log было достигнуто с печатными платами 266 и 270 нм на S . Typhimurium, значения значительно выше, чем снижение, полученное при использовании более длинных волн. Также л.monocytogenes показал снижение на ~ 4 log только для обработки УФ-светодиодами 266 и 270 нм, что на 1,0-1,5 log больше, чем при обработке 279 нм.
ТАБЛИЦА 2
Логарифмическое сокращение E. coli O157: H7, S . Typhimurium и L. monocytogenes на питательной среде после обработки ПХБ УФ-светодиодами на четырех разных длинах волн
Организм и длина волны (нм) | Среднее логарифмическое снижение a (log 10 КОЕ / мл) ± стандартное отклонение при указанной дозе | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|
0.1 мДж / см 2 | 0,2 мДж / см 2 | 0,5 мДж / см 2 | 0,7 мДж / см 2 | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
E. coli O157: SMAC | SPRAB | SMAC | SPRAB | SMAC | SPRAB | SMAC | SPRAB | 9028 . 30 ± 0,06 Ba | 2,86 ± 0,51 Aa | 4,04 ± 0,03 Ba | 4,05 ± 0,41 Aa | 6,01 ± 0,05 Aa | 5,83 ± 0,09 Ab | 6,23 ± 0,01 Aa | 5,82 ± 0,52 9028 | 9028 9028 2702,93 ± 0,27 Aa | 2,75 ± 0,22 Aa | 4,49 ± 0,34 Aa | 4,27 ± 0,29 Aa | 5,85 ± 0,12 Aa | 5,92 ± 0,43 Aa | 6,17 ± 0,23 Aa | 5,85 ± 0,23 Aa||||||||||||||||||||||||||
275 | 2.10 ± 0,03 BCa | 2,72 ± 0,41 Aa | 3,79 ± 0,04 Ba | 4,17 ± 0,49 Aa | 6,02 ± 0,20 Aa | 5,83 ± 0,35 Aa | 6,27 ± 0,11 Aa | 6,31 ± 0,09 Aa 279 | 1,89 ± 0,24 Cb | 2,65 ± 0,30 Aa | 3,16 ± 0,22 Cb | 3,95 ± 0,38 Aa | 5,86 ± 0,27 Aa | 5,21 ± 0,62 Aa | 6,17 ± 0,23 Aa | |||||||||||||||||||||||||||||||||
S . Тифимуриум | XLD | OV-XLD | XLD | OV-XLD | XLD | OV-XLDv | 9028 XLD 9028 XLD||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
266 | 1,15 ± 0,07 ABa | 0,80 ± 0,39 Aa | 1,95 ± 0,04 ABa | 1,57 ± 0,46 Aa | 5,58 ± 0,09 Aa | 0282 4,35.44 Ab6,01 ± 0,03 Aa | 5,07 ± 0,15 ABb | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
270 | 1,39 ± 0,27 Aa | 0,74 ± 0,30 ABb | 2,27 ± 0,31 Aa | 1,64 ± 0,41 Aa | 4,30 ± 0,33 Ab | 6,00 ± 0,10 Aa | 5,32 ± 0,22 Ab | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
275 | 0,97 ± 0,02 Ba | 0,84 ± 0,30 Aa | 1,76 ± 0,07 Ba | a | 1,97 ± 0,89 0,05 Ba | 3. 90 ± 0,41 ABb | 5,81 ± 0,33 Aa | 4,79 ± 0,38 Bb | ||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
279 | 0,86 ± 0,21 Ba | 0,91 ± 0,50 Aa | 1,93 ± 0,26 ABa | 1,60 ± 0,38 Aa Ba | 3,46 ± 0,12 Bb | 5,62 ± 0,37 Aa | 4,79 ± 0,38 Ba | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
L. monocytogenes | OAB | OV-OAB | OAB | OAB 9066 9066 OAB OV-OAB | OAB | OV-OAB | ||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
266 9028. 71 ± 0,15 Aa | 0,49 ± 0,05 Aa | 1,23 ± 0,08 Aa | 1,03 ± 0,05 Ab | 3,97 ± 0,09 Aa | 4,13 ± 0,48 Aa | 5,31 ± 0,05 Aa | 4,91 ± 0,34 Aa 270 | 0,42 ± 0,11 Ba | 0,46 ± 0,07 ABa | 0,88 ± 0,18 Ba | 0,98 ± 0,18 ABa | 3,57 ± 0,05 Ba | 3,87 ± 0,44 Aa | 5,46 ± 0,26 Aa | 0,57 Aa 4,72 4,72a||||||||||||||||||||||||||||||||||
275 | 0.34 ± 0,18 Ba | 0,35 ± 0,08 BCa | 0,68 ± 0,10 Ba | 0,79 ± 0,09 BCa | 2,94 ± 0,29 Ca | 3,55 ± 0,32 ABa | 4,61 ± 0,34 Ba | 5,14 ± 0,19 | ||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
0,29 ± 0,10 Ba | 0,32 ± 0,04 CDa | 0,68 ± 0,10 Ba | 0,74 ± 0,13 Ca | 2,27 ± 0,20 Db | 3,08 ± 0,24 Ba | 4,20 ± 0,23 Ca | a 4,54 |
Что касается реанимации сублетально поврежденных клеток, только в случае S . Typhimurium при дозах 0,5 и 0,7 мДж / см 2 наблюдались какие-либо существенные различия (от 0,6 до 1 логарифмическая единица) между инактивацией образцов, подвергнутых методам восстановления поврежденных клеток, и образцов, высеянных непосредственно на селективную среду. В числовом выражении разный уровень редукции E. coli O157: H7, S . Typhimurium и L. monocytogenes наблюдались для метода оверлейного агара (SPRAB в случае E. coli O157: H7), чем для селективного агара.Однако статистически значимых различий между уровнями инактивации, полученными на каждом селективном агаре (SMAC, XLD и OAB) по сравнению с агаром для восстановления поврежденных клеток, не наблюдалось, за исключением обработки высокими дозами (0,5 и 0,7 мДж / см 2 ) на . S . Тифимуриум, как уже было сказано.
Бактерицидное действие УФ-светодиодной обработки на ломтики сыра.
Логарифмическое снижение количества патогенов пищевого происхождения в нарезанных образцах сыра после обработки УФ-светодиодами представлено в. Наблюдалась взаимосвязь между уровнями снижения и лечебными дозами, аналогичная описанной ранее для экспериментов с использованием селективных сред. Приблизительно 4-5-логарифмические сокращения были достигнуты при интенсивности излучения 2 3 мДж / см для E. coli O157: H7 и S . Typhimurium и снижение на 3-4 log для L. monocytogenes . Кроме того, УФ-светодиоды, состоящие из 266-нм модулей, достигли 4,88-, 4,72- и 3,52-логарифмического уменьшения E.coli O157: H7, S . Typhimurium и L. monocytogenes соответственно, тогда как модули с длиной волны 279 нм достигли 4,04-, 3,91- и 3,24-логарифмического снижения каждого патогена, соответственно. Статистически значимые различия ( P <0,05) в количестве выживших клеток, подсчитанных на селективных средах после воздействия относительно коротких пиковых длин волн (266 и 270 нм) по сравнению с относительно длинными максимальными длинами волн (275 и 279 нм), наблюдались при 3 мДж / см 2 , максимальная доза лечения. Реанимация сублетально поврежденных клеток после обработки УФ-светодиодами не была продемонстрирована в общих данных.
ТАБЛИЦА 3
Логарифмическое сокращение E. coli O157: H7, S . Typhimurium и L. monocytogenes на нарезанном сыре после обработки печатными платами УФ-СИД на четырех различных длинах волн
Организм и длина волны (нм) | Среднее логарифмическое сокращение a (log 10 КОЕ / г) ± стандартное отклонение при указанной дозе | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|
1 мДж / см 2 | 2 мДж / см 2 | 3 мДж / см 2 | ||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
E. coli O157: H7 | SMAC | SPRAB | SMAC | SPRAB | SMAC | SPRAB | ||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
3,21 ± 0,22 Aa | 4,09 ± 0,46 Aa | 3,43 ± 0,30 Aa | 4,88 ± 0,18 Aa | 4,49 ± 0,09 Ab | ||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
270 | 2,83 ± 0. 43 Aa | 3,09 ± 0,72 Aa | 3,99 ± 0,10 Aa | 3,73 ± 0,10 Ab | 4,81 ± 0,10 Aa | 4,14 ± 0,72 ABa | ||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
275 | 2,78 ± 0,32 Aa | 2,78 ± 0,36 Aa | 2,78 ± 0,32 | 3,79 ± 0,50 Aa | 3,39 ± 0,43 Aa | 4,31 ± 0,31 Ba | 4,13 ± 0,28 ABa | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
279 | 2,80 ± 0,53 Aa | 3,3 2,86 ± 0,73 Aa | a6 3,48 0,40 Аа | 4.04 ± 0,33 Ba | 3,64 ± 0,17 Ba | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
S . Тифимуриум | XLD | OV-XLD | XLD | OV-XLD | XLD | OV-XLD | ||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
9028 0,24 Aa | 3,13 ± 0,25 Aa | 3,93 ± 0,68 Aa | 3,42 ± 0,46 Aa | 4,72 ± 0,02 Aa | 4.50 ± 0,37 Aa | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
270 | 2,82 ± 0,33 Aa | 3,08 ± 0,47 Aa | 3,70 ± 0,12 Aa | 3,43 ± 0,41 Aa | 4,73 ± 0,05 Aa | 4,37 ± 0,39 Aa | 2,83 ± 0,31 Aa | 2,91 ± 0,20 Aa | 3,24 ± 0,36 Aa | 3,35 ± 0,28 Aa | 4,24 ± 0,26 Ba | 4,04 ± 0,22 Aa | ||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
279 | 279 | Aa ± 0. 37 Aa3,17 ± 0,39 Aa | 2,94 ± 0,61 Aa | 3,91 ± 0,05 Ca | 3,96 ± 0,28 Aa | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
L. OV-OAB | OAB | OV-OAB | | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
266 | 3,09 ± 0,26 Aa | 2,510 ± 0,10 Aa3,03 ± 0,43 Aa | 3,52 ± 0,05 ABa | 3,32 ± 0,75 Aa | ||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
270 | 2,89 ± 0,19 Aa | 2,66 ± 0,62 Aa | 2,97 ± 0,44 Aa 2,97 ± 0,44 Aa Aa | 3,94 ± 0,55 Aa | 3,06 ± 0,25 ABa | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
275 | 2,54 ± 0,41 Aa | 2,04 ± 0,11 ABa | 2,72 ± 0,34 ABa 3,3 | 2,43 ± 0,32 9028 Aa | 2,57 ± 0. 18 ABb||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
279 | 2,33 ± 0,65 Aa | 1,72 ± 0,24 Ba | 2,37 ± 0,17 Ba | 2,07 ± 0,84 Aa | 3,24 ± 0,08 Ba | 2,27 ± 0,37 Bb902 902 902 УФ-светодиодная обработка значений цвета продукта.Цветовой метод CIE LAB был использован для определения изменений цвета в образцах нарезанного сыра после обработки 3 мДж / см 2 УФ-светодиодами. Наблюдались численные изменения в значениях L *, a * и b * нарезанного сыра, обработанного УФ-светодиодами, но не было значительных различий ( P > 0.05) между любой из обработок и контролем (данные не показаны). ОБСУЖДЕНИЕUVC широко используется для поверхностной стерилизации многих пищевых продуктов, включая фрукты, овощи и обработанные пищевые продукты, а также оборудования. Дозы УФС-облучения от 0,60 до 6,0 кДж / м 2 достигли снижения на 2,3–3,5 log КОЕ / плод E. coli O157: H7 и снижения от 2,15 до 3,1 логарифма КОЕ / плод Salmonella на поверхности виноградных томатов (15). E. coli O157: H7, S .Typhimurium и L. monocytogenes на свежесрезанном салате были инактивированы более чем на 4 log после 10-минутного воздействия УФ-лампы при 6,80 мВт / см 2 (16). В импульсной УФ-системе, в которой входное напряжение 3800 В использовалось для генерации 1,27 Дж / см 2 за импульс для лампы с частотой три импульса в секунду, L. monocytogenes засевали на неупакованные ломтики белого американского сыра (9 на 9 см) уменьшалась на 1,1–3,08 log КОЕ / см 2 на расстояниях 13 и 8 см с интервалами от 5 до 40 с (17).Другой многообещающий метод дезинфекции сыра, технология фотогидроионизации, состоящий из комбинированного воздействия плазмы, 16,65 мДж / см 2 УФ-излучением лампы, озоном и перекисью водорода, обеззараживает L. monocytogenes на нарезанном американском сыре немного> 2 -log КОЕ / образец через 5 мин лечения (18). Как показали эти более ранние исследования, УФС, очевидно, является эффективной технологией стерилизации, доступной для пищевой промышленности и потенциально полезной для пастеризации сыра с использованием УФ-светодиодов в качестве высококонкурентного и многообещающего нового средства. УФС, излучаемый светодиодами, — это развивающаяся технология, предлагающая альтернативу ртутным лампам, чтобы компенсировать их ограничения. Было проведено несколько исследований с участием УФ-светодиодов, но сравнение эффективности стерилизации УФ-светодиодов по длине волны в УФ-диапазоне до сих пор практически не изучалось. Одна из основных сильных сторон технологии УФ-светодиодов заключается в том, что ее можно настроить на излучение определенной длины волны. Инактивирующая способность УФ-ламп оценивалась только при длине волны 254 нм, поскольку она может генерировать только максимальную длину волны 254 нм. Следовательно, в настоящее время необходима фактическая оценка и сравнение дезинфекционной эффективности УФ-излучения по длине волны. В этом исследовании мы исследовали бактерицидные эффекты УФ-светодиодов на длинах волн 266, 270, 275 и 279 нм, а УФ-лампа на 254 нм была применена к патогенам с интенсивностью, аналогичной интенсивности УФ-светодиодов. УФ-лампы в естественных условиях излучают свет со значительно высокой интенсивностью излучения, что приводит к сильному эффекту инактивации. Однако, согласно нашим исследованиям, УФ-лампы показали значительную разницу ( P <0.05) способность стерилизовать все три патогена, чем УФ-светодиоды, при одинаковой интенсивности. Предполагалось, что этот результат связан с различиями в характеристиках излучения УФ-ламп и УФ-светодиодов. УФ-лампы излучают свет от точечного источника, который рассеивается во всех направлениях, интенсивность которого зависит от расстояния согласно классической зависимости обратных квадратов. Однако свет от УФ-светодиодов сходится в одной точке по вертикали. То есть УФ-лампы рассеивают свет на большой площади, и, таким образом, фактическая сила излучения, падающего на целевую область, может составлять лишь небольшую часть испускаемого излучения.С другой стороны, УФ-светодиоды не излучают во всех направлениях, а имеют линейный характер без значительной потери интенсивности света из-за распространения. Таким образом, мы постулируем, что свет СИД концентрируется на целевой области и, следовательно, более эффективен, чем свет от УФ-лампы. Эксперименты с УФ-светодиодами проводились при интенсивности 4 мкВт / см 2 ; поэтому мы покрыли УФ-лампу пленкой из полипропилена, чтобы отрегулировать ее интенсивность так, чтобы она была почти такой же, как у УФ-светодиодной лампы.УФ-светодиоды все еще находятся в стадии разработки, а выходная мощность прежних УФ-светодиодов относительно невелика, поэтому для точного сравнения в тех же условиях необходимо было снизить интенсивность УФ-лампы. Повышение интенсивности излучения УФ-светодиодов до уровня УФ-ламп сложно при существующих технологиях, и это техническая проблема, которую необходимо решить. Среди УФ-светодиодов с разной длиной волны светодиоды с длиной волны 266 и 270 нм обеспечили большее сокращение патогенов, чем светодиоды с более длинными волнами, но эти различия не были столь критичными.Другие исследования также продемонстрировали аналогичную тенденцию. Chevremont et al. (19) обрабатывали мезофильные бактерии, фекальные энтерококки и колиформные бактерии в сточных водах с помощью UVA и UVC-LED в течение 60 с. Снижение было только <1 log, а эффективность инактивации при 254 и 280 нм существенно не различалась. В нашем исследовании эффективность стерилизации больше зависела от дозы, чем от длины волны. УФ-светодиоды достигли> 5-кратного уменьшения E. coli O157: H7 после 0,5 мДж / см 2 и S .Typhimurium после 0,7 мДж / см 2 , а в случае L. monocytogenes они достигли> 5-log снижения после 0,7 мДж / см 2 только при 266 и 270 нм. Уровень инактивации L. monocytogenes был относительно ниже, чем у E. coli O157: H7 или S . Typhimurium, потому что L. monocytogenes является грамположительной бактерией, а два других патогена — грамотрицательными бактериями. Ультрафиолетовый свет вызывает физические движения электронов и разрушает связи ДНК.УФ-свет индуцирует образование фотопродуктов за счет прямого поглощения фотонов пиримидином и пуриновыми основаниями нуклеиновых кислот (20). Фотопродукты приводят к структурным искажениям в ДНК и прерывают транскрипцию РНК и репликацию ДНК, в конечном итоге вызывая мутагенез или гибель клеток. Основными фотопродуктами, вызываемыми УФ-излучением, являются димеры циклобутан-пиримидина (ЦПД) и фотопродукты пиримидин-6-4-пиримидона (6-4pps) (21). Грамположительные бактерии обычно более устойчивы к УФ-излучению, чем грамотрицательные бактерии.Это было продемонстрировано исследованием Beauchamp и Lacroix (22), которые сообщили, что L. monocytogenes продуцировали на 35% меньше CPD и на 10% меньше, чем E. coli , при дозе облучения УФ-лампой> 3 Дж. / см 2 . Такое низкое производство УФ-фотопродуктов указывает на более высокую устойчивость к грамположительным бактериям. Кроме того, после L. monocytogenes , Salmonella более устойчива к УФ, чем E. coli (23). Эффект инактивации ультрафиолетовых светодиодов на патогенные микроорганизмы очень значителен, но каждый метод стерилизации может давать очень разные результаты при применении к продуктам питания.В ходе наших экспериментов мы узнали, что УФ-лампы показали значительно более низкий ( P <0,05) бактерицидный эффект, чем УФ-светодиоды, при почти такой же интенсивности в ходе экспериментов со средней интенсивностью, а фактическое применение УФ-светодиодов в пищевой матрице никогда не применялось. до. Поэтому мы оценили применение УФ-светодиодов с длиной волны 266, 270, 275 и 279 нм для инокулированного нарезанного сыра. Чтобы инактивировать патогены на нарезанном сыре, потребовались гораздо более высокие дозы облучения по сравнению с микробиологической средой. Уменьшение популяций патогенов на нарезанном сыре показало тенденцию, аналогичную той, что наблюдалась в экспериментах со средой, включая отсутствие значимых различий ( P > 0,05) в пределах различных длин волн, а снижение с 3 до 4 логарифмов было достигнуто после воздействия на 3. мДж / см 2 . Что касается поврежденных клеток, использовали неселективный агар TSA или SPRAB, потому что подвергнутые стрессу субпопуляции жизнеспособны, но не культивируются в присутствии селективных агентов. Они действительно обладают метаболической активностью и могут быть реанимированы в надлежащих условиях, но не могут быть восстановлены или обнаружены на типичных селективных средах (24). E. coli O157: H7 и L. monocytogenes не продуцировали сублетально поврежденные клетки (), но S . Typhimurium после воздействий 0,5 и 0,7 мДж / см 2 дал около 1 log поврежденных клеток на всех длинах волн, оцениваемых в нашем исследовании. Choi et al. (25) исследовали сублетально поврежденные клетки на помидорах черри, инокулированных S . Typhimurium после обработки 2-10 кДж / м 2 УФ-лампой и поврежденных клеток увеличилось с 60.От 73 до 93,14% при увеличении дозы облучения. Кроме того, не было различий в оценках популяции L. monocytogenes в стерильно-дистиллированной воде между образцами, подсчитанными на MOX и TSAYE ( P > 0,05) после воздействия УФ-лампы 2 при 12,4 мДж / см, открытие, которое указывает на отсутствие сублетальных повреждений из-за воздействия ультрафиолета (26). Хотя предыдущие исследования УФ-индуцированных поврежденных клеток не особенно многочисленны, наши результаты доказывают, что УФС почти не генерирует поврежденные клетки, но что при высоких дозах облучения сублетальные поврежденные клетки могут образовываться в S .Тифимуриум. Однако селективное действие дезоксихолата натрия на XLD настолько велико, что существует тенденция недооценивать фактическое количество живых клеток в этой среде. Следовательно, поврежденные клетки в XLD не считаются значимыми. В заключение, использование УФ-светодиодов — это инновационная и эффективная технология для обеззараживания пищевых патогенов на агаризованных средах и нарезанном сыре. Облучением только нарезанного сыра в течение примерно 10 мин при дозировке 3 мДж / см 2 , ок. 99,99% патогенов были инактивированы без влияния на качественные изменения цвета или образования значительного количества поврежденных клеток. Оценка эффективности дезинфекции светодиодами УФ-С и изучение потенциальной синергии с двумя длинами волнAbstractСветодиодный модуль с двумя длинами волн УФ-С, излучающий с пиками 260 нм, 280 нм и комбинацией 260 | 280 нм вместе была оценена по эффективности инактивации и энергоэффективности при дезинфекции Escherichia coli, колифага MS2, аденовируса человека типа 2 (HAdV2) и спор Bacillus pumilus по сравнению с обычными УФ-лампами на парах ртути низкого и среднего давления. Устройство с двумя длинами волн также использовалось для измерения потенциальных синергетических эффектов нескольких длин волн на бактериальную и вирусную инактивацию и повреждение ДНК и РНК. Все пять источников УФ-излучения продемонстрировали аналогичную инактивацию E. coli . Для MS2 наиболее эффективным оказался светодиод с длиной волны 260 нм. Для HAdV2 и B. pumilus УФ-лампа MP оказалась наиболее эффективной. При измерении электрической энергии на порядок уменьшения УФ-лампа LP оказалась наиболее эффективной для инактивации E. coli и MS2; ртутные лампы LP UV и MP UV были одинаково эффективны для HAdV2 и B.pumilus спор. Среди светодиодов UV-C не было статистической разницы в электрической эффективности для инактивации спор MS2, HAdV2 и B. pumilus . Светодиоды с длиной волны 260 нм и 260 | 280 нм имели статистическое преимущество в энергии для инактивации E. coli . Для того чтобы светодиоды УФ-С соответствовали электрическому КПД на порядок логарифмического снижения обычных источников УФ УФ-излучения, они должны достигать КПД 25–39% или быть улучшены за счет конструкции интеллектуального реактора. Не было обнаружено синергии с двумя длинами волн ни для бактериальной и вирусной инактивации, ни для повреждения ДНК и РНК. Ключевые слова: Комбинированные длины волн, Электрическая энергия на заказ, Аденовирус человека типа 2, Споры Bacillus pumilus , Повреждение нуклеиновой кислотой 1. ВведениеУльтрафиолетовые (УФ) светоизлучающие диоды (светодиоды) являются новой технологией для обеззараживание воды и сточных вод. Глубокие УФ-светодиоды, излучающие УФ-С-излучение, доказали свою эффективность в инактивации суррогатов бактериальных, вирусных и простейших патогенов и были продемонстрированы для дезинфекции воды в точках использования (Chatterley and Linden, 2010, Bowker et al., 2011, Луи и др., 2016). Светодиоды UV-C обладают огромным потенциалом, поскольку они меньше, легче и менее хрупкие, чем традиционные лампы на парах ртути (Vilhunen, 2010). Кроме того, они не содержат ртути и позволяют мгновенно включать и выключать. Учитывая их небольшой размер, менее 1 мм 2 , несколько диодов могут излучать под разными углами, в отличие от традиционных трубчатых источников УФ-света, что дает больше возможностей для уникальной конструкции реактора (Lui et al. , 2016, Oguma et al., 2016). Значительное исследование оценило светодиоды UV-C на различных длинах волн для инактивации патогенов. В нескольких исследованиях оценивалась эффективность бактерицидного УФ-излучения светодиодов, излучаемого в относительно узкой полосе пропускания (номинальная полная ширина на полувысоте, FWHM, 10–12 нм) при 255 нм, 265 нм, 269 нм, 275 нм, 280 нм или около него. и 285 нм для инактивации кишечной палочки (Chatterley and Linden, 2010, Vilhunen, 2010, Bowker et al., 2011, Oguma et al., 2013, Oguma et al., 2016, Lui et al., 2016). По крайней мере, два исследования оценивали УФ-светодиоды, излучающие на длинах 250, 270 и 282 нм или около них, на предмет инактивации спор Bacillus subtilis (Wurtele et al., 2011, Morris, 2012). В другом исследовании оценивали УФ-светодиоды, излучающие на длинах волн 255 и 275 нм, для инактивации колифагов MS2 и T7 (Bowker et al., 2011). В недавнем исследовании оценивали УФ-светодиоды, излучающие на длине волны 285 нм, для инактивации аденовируса 5, MS2 и QB (Oguma et al. , 2016). В качестве новой технологии светодиоды постоянно улучшают выходную мощность, энергоэффективность, срок службы и экономическую жизнеспособность, что делает их более практичными для широкого использования (SETi, 2012, Song et al., 2016). Типичная эффективность настенных розеток для светодиодов UV-C, которая в настоящее время составляет 1–3%, по прогнозам, улучшится как минимум до 10% в течение десятилетия после аналогичных улучшений, наблюдаемых в светодиодах видимого диапазона, УФ-A и УФ-B (SETi, 2012, Harris et al., 2013). Кроме того, усовершенствования в управлении температурой, оптической конфигурации и гидродинамической конструкции постоянно улучшают производительность системы и срок службы имеющихся в продаже проточных светодиодных систем дезинфекции УФ-С (Harris et al., 2013). Благодаря этим быстрым исследованиям и разработкам существует широкий потенциал использования светодиодов UV-C в экологически чистых, электрических, фотоэлектрических или аккумуляторных технологиях обеззараживания воды и сточных вод в местах потребления (Harris et al. , 2013, Луи и др., 2014). Одним из основных преимуществ УФ-светодиодов является то, что, учитывая их компактный размер, можно комбинировать выходы с различной длиной волны для оптимизации инактивации патогенов; и, учитывая их низкое энергопотребление и повышенную эффективность, эта инактивация потенциально может происходить с низкими затратами энергии. В некоторых исследованиях по дезинфекции оценивалась комбинация нескольких длин волн УФ-светодиода на патогенные микроорганизмы и непатогенные суррогаты или контрольные микроорганизмы. Chevremont et al. комбинированные светодиоды, излучающие в диапазоне УФ-А и УФ-С, для микробной дезинфекции и химического разложения при очистке сточных вод (Chevremont et al., 2012). Oguma et al. комбинированные светодиоды, излучающие в бактерицидном диапазоне, измеряя их коллективную инактивацию E. coli (Oguma et al., 2013). Шевремонт пришел к выводу, что сочетание длин волн УФ-А и УФ-С синергетически усиливает инактивацию E. coli и Enterococcus faecalis ; однако в этой работе синергизм рассчитывался с использованием кинетики инактивации, зависящей от времени (2012). Oguma не сообщил о синергетических эффектах от комбинированных длин волн из данных инактивации на основе флюенса.Эти противоречивые результаты, а также интерес к отрасли к объединению УФ-светодиодов для дезинфекции воды и общий пробел в знаниях относительно эффективности комбинированных длин волн УФ-С на бактерии и вирусы открыли возможность для дополнительных исследований синергизма (Song et al., 2016 ). В идеале специализированная система УФ-дезинфекции будет нацелена на бактерии и вирусы путем комбинирования длины волны из доминирующей бактерицидной области (250 нм — 280 нм) с длиной волны из области поглощения полипептида ниже 240 нм (т.е.е. 220–230 нм). Эта комбинация может имитировать УФ-излучение ртутной лампы среднего давления (MP), которая, как было показано, более эффективна, чем УФ-лампы низкого давления (LP) при инактивации определенных патогенов (Malley et al., 2004, Hijnen et al. , 2006). В частности, полихроматическое излучение УФ-ламп MP более эффективно, чем УФ-лампы LP, при инактивации аденовируса из-за повреждения вирусных белков (Linden et al. , 2007, Eischeid and Linden, 2011, Beck et al., 2014). На сегодняшний день светодиоды 220–230 нм не находятся на стадии практической разработки для этого приложения.Однако светодиоды, излучающие на длине волны 280 нм, широко доступны. УФ-поглощение при 280 нм обычно используется для количественного определения белка (Aitken and Learmonth, 2001). При 280 нм белки демонстрируют относительный пик поглощения УФ из-за поглощения ароматических аминокислот тирозина и триптофана, а также дисульфидной связи цистина (Jagger, 1967, Schmid, 2001). Следовательно, разумно предположить, что светодиоды, излучающие специфически на длине волны 280 нм, могут повредить белки, что приводит к повышению эффективности по сравнению с УФ-лампами LP для инактивации определенных вирусных патогенов. В этом исследовании использовалась установка УФ-дезинфекции, которая объединила светодиоды УФ-С, излучающие на длинах волн 260 и 280 нм, которые близки к относительному пику УФ-поглощения нуклеиновых кислот и белков соответственно, для нацеливания на геномные и белковые области бактериальных и вирусных организмы. Была выдвинута гипотеза, что этот полихроматический источник ультрафиолетового излучения на основе светодиодов может обеспечивать такие же уровни бактериальной и вирусной инактивации, как и лампа на парах ртути MP, но с меньшими затратами энергии. Эффективность бактерицидной УФ-системы, объединяющей светодиоды с длиной волны 260 и 280 нм, сравнивали с эффективностью УФ-систем MP и LP для инактивации E.coli , колифаг MS2, споры аденовируса человека 2 типа (HAdV2) и Bacillus pumilus . E. coli был выбран как обычный микроорганизм и индикатор фекалий, часто используемый для оценки систем дезинфекции УФ-светодиодами. HAdV2 был выбран в качестве одного из наиболее устойчивых к УФ-облучению патогенов, что обусловливает требования к УФ-дезинфекции для всех вирусов и продемонстрировало повышенную инактивацию из-за повреждения белков (USEPA, 2006, Eischeid and Linden, 2011, Beck et al., 2014) .Колифаг MS2 и споры B. pumilus были выбраны из-за их частого использования для проверки систем полихромной УФ-дезинфекции для получения кредита аденовируса (Linden et al. , 2015). Экспериментальная установка, использованная в этом исследовании, предоставила уникальную возможность изучить потенциальные синергетические эффекты нескольких длин волн на микроорганизмы. Логарифм инактивации микроорганизмов, облученных индивидуально с помощью УФ-светодиодов с длиной волны 260 нм и 280 нм, суммировали и сравнивали с логарифмической инактивацией, достигнутой от комбинированного облучения 260 | 280 нм, чтобы изучить потенциальные синергические эффекты при заданной плотности энергии.Чтобы получить представление о механизмах возможной двухволновой синергии, было также количественно определено прямое повреждение генома колифагов HAdV2 и MS2. 2. Материалы и методы2.1. УФ-облучениеСуспензии бактерий и вирусов облучали с помощью прототипа двухволнового светодиода UVinaire ™ UV-C, поставляемого AquiSense Technologies (Эрлангер, Кентукки, рис. S1). Блок был установлен в аппарате с коллимированным пучком (Bolton and Linden, 2003) и работал в трех режимах, питая светодиоды 260 нм (39 Вт), светодиоды 280 нм (31 Вт) или комбинацию 260 нм и 280 нм. вместе (обозначаются 260 | 280 нм, 66 Вт).Спектры светодиодов (), измеренные с помощью спектрометра Maya 2000 Pro (Ocean Optics, Dunedin, FL), показали максимальную длину волны излучения при 259,6 нм и 276,6 нм с шириной полосы на полувысоте 12,6 нм и 9,8 нм соответственно. Эти спектры сравниваются с излучением УФ-лампы на парах ртути MP (Rayox, 1 кВт, Calgon Carbon Corporation, Питтсбург, Пенсильвания) и УФ-системы LP, состоящей из 4 ламп по 15 Вт на парах ртути (). Спектры излучения (вверху) светодиодов с длиной волны 260 и 280 нм при раздельном освещении, (в центре) устройства со светодиодами с длиной волны 260 и 280 нм, освещенных вместе (260 | 280 нм), и (внизу) светодиодами среднего давления (сплошной) и лампа низкого давления (пунктирная) на парах ртути Для каждого УФ-источника было проведено четыре воздействия коллимированным пучком в трех экземплярах, чтобы получить кривую реакции на дозу УФ-излучения с точностью до 3-кратной инактивации для каждого микроорганизма. Перемешанные суспензии объемом 5 мл (глубина 0,6 см, диаметр 3,5 см) облучали на расстоянии 4 см от источника светодиода УФ-С. Освещенность измеряли на поверхности воды с помощью радиометра IL-1700, детектора SED 240 и W-диффузора (International Light, Пибоди, Массачусетс). Падающее излучение варьировалось от 0,19 до 0,55 мВт / см 2 для светодиодов UV-C, от 0,35 до 1,17 мВт / см 2 для УФ-излучения MP и от 0,3 до 0,75 мВт / см 2 для экспериментов LP UV . Средние дозы УФ-излучения для испытаний коллимированного пучка определялись, как описано ранее (Bolton and Linden, 2003), с поправкой на отражение от поверхности воды, поглощение УФ-излучения (спектрофотометр Cary 100, Agilent Technologies, Санта-Клара, Калифорния), глубина образец воды и равномерность распределения света по поверхности образца.Коэффициенты Петри находились в диапазоне от 0,9 до 0,95 для работы с УФ-С светодиодами и были приблизительно 1,0 для УФ-облучения MP и УФ УФ-излучения. Дозы УФ для полихроматических светодиодов UV-C и УФ-лампы MP также учитывают относительное излучение лампы (RLE) каждого источника (спектрометр Maya 2000 Pro) и чувствительность детектора радиометра, зависящую от длины волны (указанную производителем радиометра. ), что дает поправку на фактор сенсора (Bolton and Linden, 2003, Linden and Darby, 1997). Для светодиодов UV-C RLE и чувствительность радиометра были взяты относительно средневзвешенной длины волны каждого светодиода (т.е.е. 261 нм для светодиода 260 нм, 278 нм для светодиода 280 нм и 271 нм для комбинации светодиодов 260 | 280 нм). Для MP UV значения RLE и чувствительности радиометра взяты относительно 254 нм. Поскольку свет, излучаемый полихроматическими источниками, не оказывает одинакового воздействия на микроорганизмы, его обычно взвешивают на бактерицидном уровне, чтобы учесть бактерицидные различия в длине волны излучения (Linden and Darby, 1997). Чтобы сравнить эффективность светодиода с MP UV, средняя освещенность каждого полихроматического источника света была взвешена с учетом бактерицидных факторов с использованием поглощения ДНК, которое является отраслевым стандартом для полихроматических источников УФ-излучения (Linden and Darby, 1997, USEPA, 2006). Однако для расчетов синергии светодиодов дозы УФ для комбинированного облучения 260 нм, 280 нм и 260 | 280 нм были определены с использованием расчетов средней освещенности во всем образце воды для простоты. Среднее и бактерицидное облучение, использованное в этом исследовании, представлено в таблицах S1 и S2 вспомогательной информации (SI). Облучение проводилось при комнатной температуре. Светодиодная матрица была установлена на радиаторе с установленным сзади вентилятором для отвода тепла; температура не вызывала беспокойства.Сразу после воздействия облученные образцы HAdV2 и B. pumilus были отправлены на ночь в пакетах со льдом в Агентство по охране окружающей среды США (EPA) (Цинциннати, Огайо) и проанализированы на следующий день. Образцы колифагов E. coli и MS2 охлаждали при 4 ° C перед анализом в тот же день в Университете Колорадо. Аликвоты каждого образца колифага HAdV2 и MS2 помещали в морозильную камеру при -80 ° C для последующих анализов ДНК и РНК, соответственно. 2.2. ЭнергияЭлектрическая энергия на заказ, E EO — это параметр, характеризующий эффективность использования электроэнергии в системах дезинфекции.Он использовался для интерпретации данных коллимированного луча для оценки электрической эффективности УФ-ламп LP и УФ-ламп MP для крупномасштабной обработки химических загрязнителей (Sharpless and Linden, 2005). В настоящей работе E EO использовался для оценки электрической эффективности биологической инактивации для сравнения производительности относительно новой технологии светодиодов UV-C с более распространенными лампами на парах ртути. Полученный ранее (Болтон и Стефан, 2002, Шарплесс и Линден, 2005), E EO определяет количество энергии (кВтч / м 3 ), необходимое для снижения концентрации загрязняющего вещества или микроорганизма на один порядок. величины: ΕΕΟ = Α3.6 × 106 × V × kD × C × WF [1] A — площадь облучаемой поверхности в см 2 . V — объем пробы в литрах. k D — логарифм 10 константа скорости на основе плотности потока энергии в см 2 / мДж. C — эффективность настенной пробки, указанная производителем (0,35 для LP UV, 0,15 для MP UV и 0,004, 0,005 и 0,00444 для светодиодов 260 нм, 280 нм и 260 | 280 нм соответственно). WF — водный фактор, учитывающий УФ-поглощение и глубину воды.Коэффициент 3,6 × 10 6 предназначен для преобразования между часами и секундами, мВт и кВт, а также L и м 3 (Sharpless and Linden, 2005). В случае спор HAdV2 и B. pumilus , где результаты реакции на дозу УФ-излучения следовали либо за линейной инактивацией, не происходящей из источника, либо когда данные наилучшим образом соответствовали полиному порядка 2 nd , электрическому была рассчитана энергия для конкретного логарифмического сокращения N каждого образца: E EL, N (в кВтч / м 3 ).Доза УФ (мДж / см 2 ), необходимая для получения n-логарифмического восстановления, D N , была заменена в уравнении. (1) как величина, обратная константе скорости инактивации на основе флюенса: ΕΕL, N = A × DN3,6 × 106 × V × C × WF [2] Важно отметить, что результаты для электрической энергии на заказ и электроэнергии для конкретного логарифмического сокращения, E EO и E EL, N , для экспонированных образцов представляют текущее состояние эффективности для Сравнение технологий дезинфекции. 2.3. Размножение и подсчет бактерий и вирусов2.3.1.Размножение и подсчет E. coliНочную культуру E. coli K12 (ATCC 29425) инокулировали в 100 мл стерильного трипсинового соевого бульона (TSB) и инкубировали при 37 ° C до достижения логарифмической фазы, определяемой с помощью оптическая плотность. Клетки промывали стерильным фосфатно-солевым буфером (PBS) трижды центрифугированием (5000 об / мин, 5 мин) и ресуспендировали в PBS до рабочей концентрации приблизительно 10 6 КОЕ / мл. Для подсчета E. coli облученные образцы серийно разводили в PBS перед использованием метода распределения на планшете в течение 2 часов. Объемы 100 мкл разбавленных образцов распределяли на триптическом соевом агаре (TSA) и инкубировали в перевернутом виде при 37 ° C в течение 18–24 часов. Образцы высевали в двух экземплярах. В анализ были включены планшеты, дающие от 0 до 200 колоний. 2.3.2. Размножение и подсчет колифага MS2Для колифага MS2 TSB с добавлением ампициллина / стрептомицина инокулировали бактериями-хозяевами в лог-фазе, E.coli F amp (ATCC 700891) и колифаг MS2 (ATCC 15597-B1). Суспензию инкубировали при постоянном встряхивании 5 ч при 37 ° C. После удаления бактериального мусора центрифугированием осветленный супернатант сливали в стерильные контейнеры и хранили при -20 ° C. Исходный колифаг разбавляли до рабочей концентрации 5 × 10 6 БОЕ / мл. После УФ-облучения образцы были серийно разбавлены и пересчитаны в двух экземплярах в соответствии с методом EPA 1601 (USEPA, 2001). Вкратце, 100 мкл каждого разведения добавляли в мягкий агар, содержащий бактерии-хозяева в лог-фазе.Засеянный мягкий агар выливали на чашку с агаром и давали ему затвердеть. Планшеты переворачивали и инкубировали при 37 ± 0,5 ° C в течение 16-24 часов. Подсчитывали вирусные бляшки для определения концентрации колифагов. 2.3.3. Размножение и подсчет аденовирусовАденовирус человека типа 2 (HAdV2) (ATCC VR-846, Manassas, VA) размножали в клетках карциномы легкого человека A549 (ATCC CCL-185), как описано у Ryu et al. (2015), что дает исходные титры 10 10 MPN / мл.Вирусные запасы хранили при -80 ° C до УФ-облучения. HAdV2 подсчитывали с использованием анализа общего культивируемого вируса (TCVA). Тест-культуры клеток A549 выращивали в закрытых крышкой 25-сантиметровых колбах 2 (Greiner) в минимальной необходимой среде Дульбекко (DMEM) (Life Technologies, Frederick, MD) с раствором антибиотик-антимикотик (Invitrogen, Grand Island, NY). , и инкубировали на воздухе при 37 ° C. Опытные культуры инокулировали через 3–4 дня после посадки. Перед инокуляцией образца клетки A549 промывали 7-10 мл сбалансированного солевого раствора Эрла.Образцы разводили в пять раз в PBS, и от трех до четырех серий разведений для каждого образца разделяли между 10 повторными колбами для культивирования клеток A549 (10 колб на разведение). В каждую колбу вносили по 1 мл посевного материала; колбы помещали на качалку при комнатной температуре минимум на 90 мин для обеспечения прикрепления вируса перед добавлением 10 мл среды, состоящей из DMEM с 2% сыворотки и антибиотико-антимикотической жидкости (Life Technologies). Колбы инкубировали в течение 21 дня при 37 ° C и каждую неделю проверяли на цитопатогенные эффекты (CPE).Подход наиболее вероятного числа (MPN) был использован для оценки количества инфекционных единиц в каждом образце на основе количества CPE-положительных повторов в каждой из серий пятикратных разведений. Каждый образец MPN был исследован на CPE через 2 недели и 3 недели после заражения. Удаление журнала определялось по данным MPN. HAdV2 также подсчитывали с помощью интегрированной количественной ПЦР клеточных культур (ICC-qPCR), описанной Ryu et al. (2015), который определяет количество инфекционных аденовирусов на основе вирусной ДНК, собранной из монослоя клеточной культуры.Вкратце, тестовые культуры инокулировали образцами HAdV2 и инкубировали в течение 48 часов при 37 ° C в инкубаторе с 5% CO 2 . После инкубации клеточные монослои промывали PBS для удаления внеклеточных вирусов и собирали соскабливанием после цикла замораживания-оттаивания. Чтобы уменьшить влияние потенциальных ложноположительных сигналов, реплики для ополаскивания обрабатывали вместе с набором стандартов ICC-qPCR, и их среднее количество копий вычитали для соответствующих образцов. Вирусную ДНК из клеток, собранных с инфекционными вирусами, экстрагировали, очищали, хранили и затем анализировали с помощью КПЦР (количественная полимеразная цепная реакция), как описано ранее (Ryu et al. , 2015). 2.3.4.B. pumilus , размножение и подсчетB. pumilus (ATCC 27142) был получен от Mesa Laboratories (Омаха, NE). Споры получали инокуляцией вегетативных клеток B. pumilus в бульон Columbia половинной концентрации (0,5x) (Remel, Lenexa, KS) с добавлением 0,1 мМ MnSO 4 . Затем культуры инкубировали в течение 5 дней при 35 ° C и 100 об / мин. Споры очищали градиентным разделением с использованием 58% (об. / Об.) RenoCal-76 (Bracco Diagnostics, Princeton, NJ).Препараты спор хранили в 40% (об. / Об.) Этаноле при 4 ° C до проведения УФ-экспериментов. Перед воздействием УФ-излучения споры промывали буфером Баттерфилда (Hardy Diagnostics, Санта-Клара, Калифорния) 3 раза центрифугированием (15 мин при 5184 g), как описано в Стандартном методе 9050C, раздел 1.A (APHA et al., 2012 ). Споры ресуспендировали и разбавляли буфером Баттерфилда до конечной рабочей концентрации 10 5 КОЕ / мл. Подсчет спор производился методом мембранной фильтрации, описанным в разделе 3 стандартного метода 9218B. C (APHA et al., 2012). Фильтры помещали на питательный агар (BD, Sparks, MD) с добавлением красителя трипанового синего и инкубировали при 35 ° C в течение 18–24 часов. 2.4. Статистический анализЛогинактивация рассчитывалась как log ( N o / N t ). Для E. coli и колифага MS2 данные реакции на дозу УФ были подобраны линейно, и log 10 на основе флюенса константы скорости инактивации, k D (см 2 / мДж), был определен следующим образом : где N o — количество колониеобразующих единиц (КОЕ / мл) или бляшкообразующих единиц (БОЕ / мл) необлученного контроля, N t — КОЕ / мл или БОЕ / мл для каждого образец в момент времени t , и F — это плотность энергии на данной длине волны, λ , определенная, как описано выше.Данные для спор B. pumilus также демонстрировали линейную кинетику инактивации и соответствовали приведенному выше уравнению; однако ответ на дозу УФ-излучения спор B. pumilus демонстрирует плечо, и поэтому в приведенное выше уравнение был включен постоянный член. Данные HAdV2, показавшие кривизну и плечо, в случае анализа общего культивируемого вируса (TCVA) были подогнаны с помощью полинома второго порядка. Все данные были собраны в трех экземплярах и представлены с полосами ошибок, представляющими одно стандартное отклонение. 2,5. Синергия инактивацииУФ-инактивация основана на плотности энергии излучения; поэтому потенциальные синергетические эффекты комбинированных длин волн на эффективность инактивации микроорганизмов были определены для постоянного флюенса. Светодиоды с длиной волны 260 и 280 нм обеспечивали интенсивность излучения объединенной светодиодной системы с длиной волны 260 | 280 нм в несколько неравных количествах, при этом светодиоды УФ-С с длиной волны 260 нм составляли 0,475, а светодиоды УФ-С 280 нм составляли 0,525 от общей освещенности, излучаемой комбинированный светодиодный блок 260 | 280 нм.Следовательно, результаты реакции на дозу УФ-излучения для светодиодов с длиной волны 260 нм и 280 нм были умножены на 0,475 и 0,525 соответственно и суммированы вместе для сравнения с результатами реакции на дозу УФ-излучения от комбинированных светодиодов с длиной волны 260 | 280 нм. Независимый двусторонний парный тест t использовался для определения значимости (<0,05). 2.6. Синергетическое повреждение вирусной ДНК и РНКВ этом исследовании также измерялось потенциальное синергическое повреждение вирусных геномов после воздействия УФ-излучения от комбинированного излучения 260 | 280 нм.Повреждение ДНК аденовируса, измеренное как логарифм уменьшения амплификации аденовирусного генома, было измерено путем анализа повреждения фрагмента пары длиной 1,1 килобаз с использованием опубликованного метода долгосрочной количественной полимеразной цепной реакции (LR-qPCR) (Beck et al. ., 2014). Повреждение РНК колифага MS2, измеренное как логарифм уменьшения для каждого ампликона из 1185 пар оснований, было измерено в соответствии с опубликованным методом ПЦР с обратной транскрипцией (RT) (Beck et al., 2016). Как описано выше, потенциальную синергию измеряли путем сравнения логарифма снижения усиления после воздействия светодиодного блока 260 | 280 нм с суммой логарифмического уменьшения усиления от соответствующих вкладов светодиодов 260 нм и 280 нм. Двусторонний независимый парный тест t использовался для выявления значимости (p <0,05). 3. Результаты и обсуждение3.1. УФ-инактивацияРезультаты реакции на дозу УФ-излучения в результате испытаний коллимированного луча с УФ-светодиодами и УФ-лампами MP и LP УФ приведены в. УФ-доза-реакция a) E. coli , b) колифаг MS2, c) HAdV2, измеренный с помощью ICC-qPCR, d) HAdV2, измеренный на культуре клеток, и e) спор B. pumilus на LP-облучение от УФ-светодиодов, излучающих вместе с длиной волны 260 нм, 280 нм и 260 | 280 нм.Результаты показаны в сравнении с облучением MP UV и LP UV, если таковое имеется. Планки погрешностей представляют собой стандартное отклонение ± 1. Вверх-вниз показано, что предел обнаружения анализа был достигнут. 3.1.1. E. coliУФ-инактивация E. coli () показала «хвост» при высоких дозах, частично связанный с исходной концентрацией E. coli и разведениями, использованными для экспериментов. Все пять источников УФ-излучения достигли снижения более чем на 3 логарифма при дозах УФ-излучения 12 мДж / см 2 или ниже.Константы скорости инактивации на основе флюенса, k D , приведены в. Таблица 1.Константы скорости инактивации (log 10 ), k D , колифагов E. coli и MS2. Для HAdV2 и B. pumilus доза УФ, необходимая для 2-логарифмической инактивации, а также логарифм инактивации (y) в зависимости от дозы УФ (x).
|